Producción de jarabe de alta fructosa y sustituto del tampón de coco.
Release Time：2019-05-08 11:42Author：sd888Source：未知
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Producción de jarabe de alta fructosa y sustituto del tampón de coco.
En los últimos años, con el rápido aumento del precio de la sacarosa, la aplicación de fructosa ha aumentado de manera constante debido a su alto sabor dulce y refrescante. La fructosa comercial es un producto del almidón de maíz. Su proceso de preparación es el siguiente: en primer lugar, el almidón de maíz se hidroliza en glucosa, y luego la glucosa se forma en fructosa por fructosa isomerasa. El contenido de fructosa en el producto es de alrededor del 42%. Sobre esta base, la eliminación de la glucosa mediante cromatografía de varias etapas puede aumentar la pureza de la fructosa al 55% o al 90%, lo que se conoce como jarabe de alta fructosa (HFCS). Un método prometedor para la preparación de productos con alto contenido de fructosa es la hidrólisis de plantas ricas en fructanos para producir alto contenido de fructosa. El propósito principal de este trabajo es estudiar las propiedades enzimáticas de la fructozima comercial de novozymes y preparar productos con alto contenido de fructosa hidrolizando la inulina con esta enzima. El pH y la temperatura óptimos de la enzima de fructosa fueron de 4,5 y 60 ° C. Los estudios sobre la estabilidad del pH de la enzima mostraron que la enzima podría estabilizarse durante más de 12 horas a temperatura ambiente en el rango de pH 4-6. La enzima de fructosa en 60 ° C estable 6 h, no disminuyó la actividad enzimática obvia. Además, la fructozima es una de las inulinasas en resistencia al calor, y solo el 20% de la actividad de la enzima se perdió después de 12 horas de calentamiento. Estas características de la fructozima son propicias para la producción a gran escala de fructosa pura, ya que una mayor temperatura de la reacción enzimática es propicia para la inhibición del crecimiento microbiano y puede mejorar la concentración del sustrato de inulina. Además, un pH óptimo más bajo previene la formación de color y subproductos químicos indeseables. Se estudió la influencia de la velocidad de oscilación en la reacción de la enzima, y la velocidad de oscilación óptima fue de 150 RPM. Para una operación práctica, la tasa de oscilación se puede seleccionar de 150 a 200 RPM. Los resultados muestran que el tipo de tampón tiene una gran influencia en la actividad de la fructozima, y el tampón de ácido acético es el mejor tampón para la fructozima. Cuando la concentración de tampón de ácido acético fue inferior a 100 mM, no tuvo efecto sobre la actividad de la enzima; cuando era superior a 100 mM, tenía un mayor efecto sobre la actividad de la enzima, y la inhibición completa apareció a 500 mM. Los iones químicos y de metales en la investigación de la actividad enzimática muestran que la influencia de Ag ~ +, Hg ~ + y Cu ~ (2 +), Mg ~ (2+) y Fe ~ (3+) que tiene una fuerte inhibición de la actividad enzimática, con ~ reciente (2 +) y Fe ~ (2 +), Na ~ + y Pb ~ (2 +), Li ~ +, EDTA, 2 - mercaptoetanol para cierta actividad enzimática, y Ca ~ (2 +), Ba ~ ( 2 +), K ~ +, Al ~ (3 +) y Mn ~ (2 +) y Co ~ (2 +) tienen el efecto de mejorar la actividad de la enzima. El HPGFC mostró que el peso molecular de la inulina era de 940 g, el DP entre 3 y 4, y el de la inulina de achicoria era de 2029 g, el DP entre 9 y 10, lo que sugiere que la inulina y la inulina de achicoria eran oligosacáridos en lugar de polisacáridos. La especificidad del sustrato de la fructozima mostró que era activa contra la inulina, la sacarosa y la rafinosa, lo que indicaba que contenía cierta actividad de inulinase exógena (-d-fructosan fructosa hidrolasa, EC 3.2.1.80), y una enzima exógena cortó la fructosa de Reducir el final de la inulina. Además, el S / I de la fructozima es 1.79 (I / S es 0.56), por lo que esta enzima no es una invertasa sino inulina. La afinidad del sustrato y las constantes cinéticas de la fructozima se investigaron más a fondo. La Km y Vmax de la hidrólisis de sacarosa fueron 0.34 mm y 1.65 mm l-1 min-1, respectivamente, y la Km y Vmax del sustrato de inulina fueron 0.16 mm y 1.32 mm l-1 min-1, respectivamente.
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